DNAMarkerIplus在4℃条件下可稳定保存3个月-20℃下可长期保存这种稳定性确保可靠性

DNA Marker V是一种即用型的DNA分子量标准，广泛应用于琼脂糖凝胶电泳中，用于估算DNA片段的大小。它由6条线性双链DNA条带组成，条带大小分别为200 bp、400 bp、700 bp、1000 bp、1500 bp和2000 bp。其中，1000 bp条带的浓度较高（100 ng/5 µL），显示为加亮带，便于在电泳后快速定位。产品特性即用型设计：已预混1×Loading Buffer，可直接取2-5 µL进行电泳。清晰的电泳条带：条带大小准确，带型清晰，稳定性好。适用范围：适用于1.0%-2.0%的琼脂糖凝胶电泳。使用方法上样量：根据加样孔的宽度，取2-5 µL加入琼脂糖凝胶的加样孔中。每1 mm × 1 mm的加样孔上样1 µL；如果加样孔较宽，可适当增加上样量。电泳条件：凝胶浓度：建议使用1.0%-2.0%的琼脂糖凝胶。电泳电压：4-10 V/cm，电泳时间20-25分钟。染色与观察：电泳结束后，使用溴化乙锭（EB）或其他DNA染料染色，在紫外灯下观察条带。如果使用Goldview等染料，由于灵敏度较低，建议适当增加Marker的上样量。

6×DNA 在不同浓度的琼脂糖凝胶中，溴酚蓝和二甲苯青的迁移速率稳定，为实验提供可靠的参考

λ DNA HindIII + EcoRI是一种常用的DNA分子量标准，广泛应用于琼脂糖凝胶电泳中，用于估算DNA片段的大小。它是通过将λ噬菌体DNA用HindIII和EcoRI两种限制性内切酶完全酶切后获得的，具有明确的片段大小分布。产品特性片段组成：λ DNA HindIII + EcoRI Marker由13条双链DNA条带组成，片段大小范围从125 bp到21,226 bp。即用型设计：已预混1×上样缓冲液，可直接用于凝胶电泳。稳定性：室温保存一个月带型无变化，但建议低温保存以防止核酸酶污染。使用方法电泳条件：凝胶浓度：建议使用0.5%-1.0%的琼脂糖凝胶。电泳缓冲液：1×TAE或0.5-1×TBE。电压：6-8 V/cm，电泳时间30-60分钟。热处理：使用前建议在65℃水浴中加热5分钟，然后在冰浴中冷却3分钟，以避免COS位点的片段结合。上样量：根据加样孔宽度，取2-5 µL加入凝胶加样孔中。染色与观察：电泳结束后，使用溴化乙锭（EB）或其他DNA染料染色，在紫外灯下观察条带。

在分子生物学实验中，6×聚蔗糖凝胶上样缓冲液 III 是一种常用的试剂。

在分子生物学和生物医学研究中，荧光定量PCR（qPCR）是基因表达分析和病原体检测的核心技术之一。One Step RT-qPCR SYBR Green Kit (UDG Plus)通过整合尿嘧啶-DNA糖基化酶（UDG）技术，为研究人员提供了一个高效、防污染且便捷的一步法qPCR解决方案，特别适用于需要快速、准确检测RNA样本的实验场景。 一步法RT-qPCR的优势 传统的RT-qPCR实验通常需要先进行逆转录反应，将RNA转录为cDNA，然后再进行qPCR扩增。这种方法虽然能够获得准确的结果，但操作步骤繁琐，容易引入误差。而One Step RT-qPCR SYBR Green Kit (UDG Plus)采用了一步法设计，将逆转录和qPCR扩增整合到同一个反应体系中，大大简化了操作流程，减少了人为误差，提高了实验的重复性和可靠性。 UDG技术的防污染机制 UDG技术是该试剂盒的核心亮点之一。UDG能够特异性识别并降解含有尿嘧啶（U）的DNA，从而防止实验室中残留的PCR产物污染。在qPCR反应开始前，UDG会降解引物或模板中的尿嘧啶，防止非特异性扩增。

SYBR多次冻融实验中表现出良好的稳定性，即使经过20次冻融，其扩增性能与对照组相比无显著差异

在分子生物学实验中，核酸电泳是检测核酸片段大小和纯度的关键技术之一。3×甲酰胺凝胶上样缓冲液作为一种高效的辅助试剂，为核酸电泳提供了重要的支持。组成成分3×甲酰胺凝胶上样缓冲液的主要成分包括：甲酰胺（Formamide）：高浓度的甲酰胺能够有效变性核酸，使其保持单链状态，避免核酸在电泳过程中形成二级结构，从而实现更准确的分子量测定。二甲苯青（Xylene Cyanol FF） 和 溴酚（Bromophenol Blue）：这两种染料作为示踪剂，可帮助观察电泳的进程。二甲苯青迁移速度较慢，适用于较大片段的示踪；溴酚蓝迁移速度较快，适用于较小片段的示踪。EDTA（乙二胺四乙酸）：螯合二价金属离子，防止核酸被核酸酶降解，同时维持电泳过程中的缓冲环境。使用方法样品混合：将核酸样品与3×甲酰胺凝胶上样缓冲液按体积比2:1混合，例如，5 μL核酸样品加入2.5 μL缓冲液。变性处理：混合后的样品在70℃加热5-10分钟，使核酸充分变性。加热后立即置于冰上冷却，以防止核酸重新折叠。电泳上样：将处理后的样品加入凝胶的加样孔中，进行电泳。

这种特性使得EB在低浓度下（如10 µg/ml）染色后无需脱色处理，即可在紫外光下清晰观察到核酸条带

在植物分子生物学和遗传学研究中，快速、高效地从植物组织中提取DNA并进行PCR扩增是实验成功的关键。Plant Direct PCR Master Mix (2×) (Without Dye)凭借其独特的配方和高效性能，为植物样本的直接PCR扩增提供了强大的支持。 Plant Direct PCR Master Mix (2×) (Without Dye)是一种专为植物样本设计的预混PCR反应体系。它能够有效去除植物组织中的多糖、多酚和其他抑制物，这些成分通常会干扰PCR反应的进行。通过优化的反应缓冲液和特殊的酶系统，该Master Mix能够直接从植物叶片、茎、根等组织中扩增目标DNA，无需复杂的样本前处理步骤，大大节省了时间和人力成本。 该Master Mix的“2×”浓度设计意味着实验人员只需将植物样本、引物和水加入其中，即可快速配制好反应体系。这种预混液不仅简化了操作流程，还减少了人为误差，确保了反应体系的均一性和稳定性。此外，无染料配方为后续实验提供了更大的灵活性。实验人员可以根据需要选择是否添加染料，或者直接用于下游应用，如克隆、测序或无染料的凝胶电泳分析。

已预混1×Loading Buffer，可直接取2-5 µL进行电泳，无需额外处理。

甲酰胺加样缓冲液(2×)是一种专为RNA电泳设计的2倍浓缩上样缓冲液，广泛应用于分子生物学实验中。它主要由去离子甲酰胺、溴酚蓝、EDTA等组成，能够为RNA电泳提供稳定的环境和清晰的指示。产品特性成分：主要由去离子甲酰胺、溴酚蓝、EDTA等组成。指示剂：以溴酚蓝为指示剂，稀释至1×后比重仍然较大，加样后易下沉，且颜色清晰可见。保存条件：2-8℃避光保存，有效期为1年。使用方法稀释：将2×甲酰胺加样缓冲液与RNA样品等比例混合，稀释至1×使用。电泳操作：将混合后的样品直接加入凝胶加样孔中，进行电泳。注意事项避免RNase污染：实验过程中需佩戴无RNase手套，避免使用可能含有RNase的耗材。个人防护：操作时需佩戴实验服和一次性手套，以确保安全。分装使用：如果每次使用量较小，建议分装后使用，避免反复冻融。用途限制：本产品仅供科研使用，不得用于临床诊断或其他非科研用途。

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