通常每次取5 µL加入凝胶加样孔中。如果加样孔较宽，可适当增加上样量。

核酸内切酶VIII（Endonuclease VIII，Endo VIII）是一种具有N-糖基化酶和AP-裂解酶活性的DNA损伤修复酶，广泛应用于基因损伤修复研究。其截短体则是通过基因工程改造，删除部分氨基酸序列而获得的变体，通常用于特定的研究目的，如提高酶的稳定性或特异性。 功能与特性 N-糖基化酶活性：识别并切除双链DNA上受损的嘧啶碱基，产生脱嘌呤（AP）位点。 AP-裂解酶活性：在AP位点的3'和5'端切割磷酸二酯键，产生具有3'和5'磷酸的碱基缺口。 高纯度与稳定性：核酸内切酶VIII截短体通过重组表达获得，纯度高，无核酸外切酶、核酸内切酶和RNase残留。 热失活：75℃孵育10分钟可使酶失活。 应用场景 DNA损伤修复研究：用于模拟和修复DNA损伤，特别是在氧化损伤研究中。 单细胞凝胶电泳（彗星试验）：评估细胞内和体外的氧化DNA损伤。 NGS建库：在二代测序中，特异性切除含AP位点的模板链，实现双端测序。 酶法合成DNA：释放DNA链，用于合成特定的DNA结构。

耐热核糖核酸酶H能够在高温下高效地完成这一任务，避免了RNA模板在高温条件下的降解问题。

UTP（尿苷三磷酸）是一种重要的核苷酸，广泛应用于分子生物学和生物化学实验中。100 mM UTP溶液（无核酸酶）是一种高纯度、无污染的试剂，适用于多种实验需求。 产品特点 高纯度：纯度≥99%，经过严格测试，确保无DNase、RNase、磷酸酶和蛋白酶污染。 无核酸酶污染：使用无核酸酶水配制，确保RNA和DNA的完整性。 稳定性高：在-20℃条件下可稳定保存长达2年，避免反复冻融。 用途广泛：适用于体外转录、RNA合成与扩增、siRNA合成等多种实验。 应用场景 体外转录：用于SP6、T3和T7 RNA聚合酶的反应，生成高质量的RNA。 RNA合成与扩增：提供能量支持，确保反应顺利进行。 siRNA合成：用于合成小干扰RNA，用于基因沉默。 使用注意事项 避免反复冻融：反复冻融会降低UTP的效率。 低温操作：使用时需在冰上操作，并在使用后立即放回-20℃保存。 防止污染：实验过程中需戴一次性手套，避免RNase污染。 100 mM UTP溶液（无核酸酶）凭借其高纯度、无污染和稳定性，已成为分子生物学实验中的重要试剂，特别适合需要高纯度和高效率的实验。

它具有与 EB 相当的灵敏度，能够检测到低浓度的核酸分子，同时避免了 EB 的高毒性和潜在致癌性。

碱性凝胶加样缓冲液(6×)是一种6倍浓缩的DNA上样缓冲液，专为碱性琼脂糖凝胶电泳设计。它以溴酚蓝和二甲苯青FF为指示剂，稀释至1×后比重较大，加样后易下沉，颜色清晰可见，便于电泳指示。产品特性主要成分：溴甲酚绿、二甲苯青FF、Ficoll 400、NaOH和EDTA。保存条件：室温避光保存，有效期为12个月。用途：主要用于碱性琼脂糖凝胶电泳。使用方法稀释：将6×碱性凝胶加样缓冲液与DNA样品按1:5的比例混合，稀释至1×使用。电泳操作：将混合后的样品加入凝胶加样孔中，进行电泳。注意事项分装使用：如果每次使用量较小，建议分装后使用，避免反复冻融。 避免污染：操作时需佩戴实验服和一次性手套，以确保安全。开封后尽快使用：试剂开封后应尽快使用，以防影响后续实验效果。碱性凝胶加样缓冲液(6×)凭借其高效、稳定和清晰的指示特性，成为碱性琼脂糖凝胶电泳实验中的理想选择。

该试剂盒采用一步法RT-qPCR技术，将逆转录和定量PCR反应集成在同一管中完成。

在荧光定量PCR（qPCR）实验中，准确的荧光信号检测是实验成功的关键。50× ROX Reference Dye作为一种常用的被动参考染料，为qPCR实验提供了重要的校准功能，确保了荧光信号的准确性和稳定性。 ROX Reference Dye的作用机制 ROX染料是一种被动参考荧光染料，其主要作用是校正qPCR反应中的非特异性荧光背景和孔间荧光信号的差异。在qPCR实验中，荧光信号的强度可能会受到多种因素的影响，如仪器的荧光检测系统的波动、反应体系的差异以及孔间位置的差异等。ROX染料通过提供一个稳定的荧光背景，帮助校正这些非特异性信号，从而提高定量结果的准确性和重复性。 50× ROX Reference Dye的应用 荧光定量PCR（qPCR）：在qPCR实验中，ROX染料通常以一定比例添加到反应体系中。它不会参与PCR反应，但会提供一个稳定的荧光背景，用于校正仪器检测到的荧光信号。通过校正，可以更准确地反映目标基因的扩增情况，从而提高定量结果的可靠性。 多重qPCR：在多重qPCR实验中，ROX染料的作用尤为重要。

3'-羟基攻击5'-磷酸末端，形成新的磷酸二酯键，从而完成DNA片段的连接。

等温扩增变色检测试剂盒是一种基于环介导等温扩增（LAMP）技术的核酸检测工具，能够通过颜色变化直观地检测样品中是否存在目标DNA。该技术利用特异性引物和链置换DNA聚合酶（如Bst DNA Polymerase），在恒定温度下快速扩增DNA，无需复杂的温度循环。工作原理LAMP技术通过针对目标基因的不同区域设计4-6条特异性引物，利用链置换DNA聚合酶（如Bst DNA Polymerase）启动DNA合成，形成哑铃状互补链，并通过连续链置换进入循环扩增阶段。扩增产物的积累会导致反应体系的颜色变化，从而实现可视化检测。产品特点高灵敏度：灵敏度比传统PCR方法高2-5个数量级，检测下限可达20-200 copies/μL。快速检测：仅需1小时即可完成反应，适合快速检测。可视化结果：无需电泳，通过颜色变化（如紫罗兰或蓝紫色变为天蓝色或深天蓝色）即可判断结果。防污染设计：采用dU掺入和热敏型UDG酶技术，有效防止扩增产物污染。应用场景该试剂盒广泛应用于检测生物样品中的病原体、微生物污染等。例如，碧云天的BeyoColor™等温扩增变色检测试剂盒可用于检测特定病原体的感染。此

对于小于500 bp的DNA片段，检测信号可能较弱，建议使用其他染料如SYBR Green I。

在分子生物学实验中，核酸电泳是检测核酸片段大小和纯度的关键技术之一。3×甲酰胺凝胶上样缓冲液作为一种高效的辅助试剂，为核酸电泳提供了重要的支持。组成成分3×甲酰胺凝胶上样缓冲液的主要成分包括：甲酰胺（Formamide）：高浓度的甲酰胺能够有效变性核酸，使其保持单链状态，避免核酸在电泳过程中形成二级结构，从而实现更准确的分子量测定。二甲苯青（Xylene Cyanol FF） 和 溴酚（Bromophenol Blue）：这两种染料作为示踪剂，可帮助观察电泳的进程。二甲苯青迁移速度较慢，适用于较大片段的示踪；溴酚蓝迁移速度较快，适用于较小片段的示踪。EDTA（乙二胺四乙酸）：螯合二价金属离子，防止核酸被核酸酶降解，同时维持电泳过程中的缓冲环境。使用方法样品混合：将核酸样品与3×甲酰胺凝胶上样缓冲液按体积比2:1混合，例如，5 μL核酸样品加入2.5 μL缓冲液。变性处理：混合后的样品在70℃加热5-10分钟，使核酸充分变性。加热后立即置于冰上冷却，以防止核酸重新折叠。电泳上样：将处理后的样品加入凝胶的加样孔中，进行电泳。

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